Ćwiczenie 1.04.2026 – GRUPA 1

Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

Zagadnienia obowiązujące:

1. Budowa komórki prokariotycznej, eukariotycznej, budowa wirusów.
2. Metody mikroskopowe, barwienie preparatów.
3. Hodowla: podłoża bakteriologiczne – definicja, rodzaje, podziały, zastosowanie.
4. Kolonia bakteryjna/grzybicza – definicja, cechy opisujące morfologię kolonii.
5. Zasady hodowli drobnoustrojów – temperatura, skład gazowy, czas inkubacji.
6. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
7. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
8. Hemoliza i jej rodzaje.
9. Identyfikacja w oparciu o:

• właściwości biochemiczne,
• metody immunologiczne,
• metody molekularne (PCR, RealTime-PCR, hybrydyzacja, PFGE),
• inne - spektrometria mas (MALDI-TOF).

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 30.03.2026 – GRUPA 11

Ćwiczenie 30.03.2026 – GRUPA 7

Ćwiczenie 3.04.2026 – GRUPA 2

Organizacja i regulamin zajęć. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej i grzybiczej.

Zakres tematyczny obejmuje:

1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii.
2. Mikroskop świetlny – budowa i obsługa mikroskopu podczas oglądania badanych preparatów.
3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
4. Barwienie preparatów metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
5. Morfologia komórki bakteryjnej:

• kształt,
• wielkość,
• sposób ułożenia w preparacie,
• sposób barwienia w metodzie Grama.

6. Metody barwienia preparatów:

• barwienie proste i złożone,
• barwienie pozytywne, negatywne i pozytywno-negatywne.

7. Budowa i charakterystyka bakterii (komórka prokariotyczna), grzybów (komórka eukariotyczna) i wirusów.

Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Piotr Wieczorek

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 25.03.2026 – GRUPA 1

Organizacja i regulamin zajęć. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej i grzybiczej.

Zakres tematyczny obejmuje:

1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii.
2. Mikroskop świetlny – budowa i obsługa mikroskopu podczas oglądania badanych preparatów.
3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
4. Barwienie preparatów metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
5. Morfologia komórki bakteryjnej:

• kształt,
• wielkość,
• sposób ułożenia w preparacie,
• sposób barwienia w metodzie Grama.

6. Metody barwienia preparatów:

• barwienie proste i złożone,
• barwienie pozytywne, negatywne i pozytywno-negatywne.

7. Budowa i charakterystyka bakterii (komórka prokariotyczna), grzybów (komórka eukariotyczna) i wirusów.

Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Piotr Wieczorek

Ćwiczenie 23.03.2026 – GRUPA 9

Ćwiczenie 27.03.2026 – GRUPA 8

Zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Ogólne zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.
2. Szczegółowe zasady pobierania: moczu, krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego, wymazów z górnych dróg oddechowych, plwociny, BAL, wymazy z ran, ropa i inne.
3. Pobieranie materiałów do badań przesiewowych (w kierunku nosicielstwa ważnych patogenów).
4. Pobieranie materiałów w kierunku diagnostyki wirusologicznej (badania z zakresu biologii molekularnej).
5. Podłoża transportowe i transportowo-wzrostowe.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 16.03.2026 – GRUPA 9

Ćwiczenie 18.03.2026 – GRUPA 5

Ćwiczenie 20.03.2026 – GRUPA 8

Dezynfekcja i sterylizacja – metody i kontrola oraz czynniki wpływające na ich skuteczność.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Podstawowe definicje: dekontaminacja, dezynfekcja, antyseptyka, aseptyka, środek dezynfekcyjny, sanityzacja.
2. Podział metod dezynfekcji.
3. Charakterystyka grup środków dezynfekcyjnych.
4. Cechy charakterystyki środka dezynfekcyjnego.
5. Zasady przygotowywania środków dezynfekcyjnych i przeprowadzania dezynfekcji chemicznej.
6. Czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji.
7. Zasady dezynfekcji rąk.
8. Zasady postępowania aseptycznego.
9. Sterylizacja – definicja, cele, zasady wyboru metod sterylizacji.
10. Metody sterylizacji z podziałem i charakterystyką sterylizacji fizycznej, chemicznej i mechanicznej.
11. Metody kontroli dezynfekcji – jakościowe i ilościowe.
12. Metody kontroli skuteczności procesów sterylizacji – wskaźniki fizyczne, chemiczne i biologiczne.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Materiał dydaktyczny 1

Materiał dydaktyczny 2

Materiał dydaktyczny 3

Ćwiczenie 9.03.2026 – GRUPA 9

Ćwiczenie 10.03.2026 – GRUPA 3

Ćwiczenie 11.03.2026 – GRUPA 5

Ćwiczenie 13.03.2026 – GRUPA 8

Podstawy antybiotykoterapii, metody badania lekowrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki oraz interpretacja wyników, oporność bakterii na antybiotyki.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Znaczenie pojęć: wrażliwość mikrobiologiczna, minimalne stężenie hamujące (MIC), minimalne stężenie bakteriobójcze (MBC), szczep wrażliwy (W), szczep wrażliwy zwiększona ekspozycja (WZE), szczep oporny (O), inokulum.
2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe, metody ilościowe, metody półilościowe.
3. Zasada, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodami:

• dyfuzyjnymi: metoda dyfuzyjno-krążkowa, metoda z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń antybiotyku (np. E-testy),
• rozcieńczeniowymi: metoda rozcieńczeniowa w bulionie, metoda rozcieńczeniowa w agarze, metoda stężeń granicznych.

4. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:

• antybiotyk, chemioterapeutyk,
• terapia przeciwdrobnoustrojowa, terapia empiryczna, terapia celowana, terapia sekwencyjna, terapia skojarzona,
• mechanizmy działania antybiotyków,
• efekty działania - działanie bakteriobójcze i bakteriostatyczne,
• skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD: czas powyżej MIC (T>MIC), stężenie maksymalne do MIC (Cmax/MIC), wielkość pola pod krzywą (AUC24/MIC),
• efekt poantybiotykowy (PAE),
• spektrum działania antybiotyków i chemioterapeutyków,
• działania niepożądane antybiotyków.

5. Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków: antybiotyki β-laktamowe, aminoglikozydy, makrolidy, chinolony, tetracykliny, glikopeptydy, linkozamidy.
6. Oporność bakterii na antybiotyki: oporność mikrobiologiczna, szczep dziki, oporność naturalna, oporność nabyta.
7. Genetyczne podstawy oporności bakterii na antybiotyki: mutacja, koniugacja, transformacja, transdukcja.
8. Kliniczne fenotypy oporności: MRSA, HLAR, MLSB, VRE, ESBL, KPC, MBL (w tym NDM), OXA-48.
9. Leki przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe – grupy, przykłady leków, mechanizm działania, krótka charakterystyka.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 2.03.2026 – GRUPA 9

Ćwiczenie 3.03.2026 – GRUPA 3

Ćwiczenie 4.03.2026 – GRUPA 5

Ćwiczenie 6.03.2026 – GRUPA 8

Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

Zagadnienia obowiązujące:

1. Budowa komórki prokariotycznej, eukariotycznej, budowa wirusów.
2. Metody mikroskopowe, barwienie preparatów.
3. Hodowla: podłoża bakteriologiczne – definicja, rodzaje, podziały, zastosowanie.
4. Kolonia bakteryjna/grzybicza – definicja, cechy opisujące morfologię kolonii.
5. Zasady hodowli drobnoustrojów – temperatura, skład gazowy, czas inkubacji.
6. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
7. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
8. Hemoliza i jej rodzaje.
9. Identyfikacja w oparciu o:

• właściwości biochemiczne,
• metody immunologiczne,
• metody molekularne (PCR, RealTime-PCR, hybrydyzacja, PFGE),
• inne - spektrometria mas (MALDI-TOF).

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

TAKSONOMIA DROBNOUSTROJÓW

Ćwiczenie 23.02.2026 – GRUPA 9

Ćwiczenie 24.02.2026 – GRUPA 3

Ćwiczenie 25.02.2026 – GRUPA 5

Ćwiczenie 27.02.2026 – GRUPA 8

Organizacja i regulamin zajęć. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej i grzybiczej.

Zakres tematyczny obejmuje:

1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii.
2. Mikroskop świetlny – budowa i obsługa mikroskopu podczas oglądania badanych preparatów.
3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
4. Barwienie preparatów metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
5. Morfologia komórki bakteryjnej:

• kształt,
• wielkość,
• sposób ułożenia w preparacie,
• sposób barwienia w metodzie Grama.

6. Metody barwienia preparatów:

• barwienie proste i złożone,
• barwienie pozytywne, negatywne i pozytywno-negatywne.

7. Budowa i charakterystyka bakterii (komórka prokariotyczna), grzybów (komórka eukariotyczna) i wirusów.

Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Piotr Wieczorek

Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Paweł Sacha

Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Piotr Majewski

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Pierwszy wykład z mikrobiologii

odbędzie się 23.02.2026 r. (poniedziałek) w godz. 12:15-13:45

w Auli 0.2 WNoZ.

Pozostałe wykłady będą odbywały się zgodnie z harmonogramem zajęć.

Pierwsze ćwiczenia odbędą się dla odpowiednich grup (zgodnie z harmonogramem zajęć) w dniach 23.02.2026 r. (gr. 9), 24.02.2026 r. (gr. 3), 25.02.2026 r. (gr. 5), 27.02.2026 r. (gr. 8), 25.03.2026 r. (gr. 1), 30.03.2026 r. (gr. 11), 30.03.2026 r. (gr. 7), 3.04.2026 r. (gr. 2), 7.05.2026 r. (gr. 6), 18.05.2026 r. (gr. 10), 22.05.2026 r. (gr. 4).

Ćwiczenia będą odbywały się w sali dydaktycznej Zakładu Diagnostyki Mikrobiologicznej i Immunologii Infekcyjnej.

Na pierwsze ćwiczenia student obowiązany jest:

1. Przyjść ubrany w biały fartuch laboratoryjny z długimi rękawami oraz miękkie obuwie (obowiązuje bezwzględnie zmiana obuwia – nie wolno używać ochraniaczy na buty).
2. Fartuch na czas wszystkich zajęć należy pozostawiać w szatni studenckiej zakładu. Fartuchy po skończonych zajęciach będą poddane utylizacji.
3. Wszyscy studenci przed rozpoczęciem zajęć oczekują przed wejściem do zakładu.