Uniwersytet Medyczny w Białymstoku. Aktualności.
  • Aktualności. Mikroskop świetlny.
  • Ostatnia zmiana 10.12.2025 przez Zakład Diagnostyki Mikrobiologicznej i Immunologii Infekcyjnej

    Aktualności

     

    Ćwiczenie 16/17/18.12.2025

    Metody oznaczania wrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki (interpretacja wyników) – metody jakościowe i ilościowe.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Zakres tematyczny seminarium z dnia 9.12.2025.
    2. Sposób wykonania, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodą dyfuzyjno-krążkową.
    3. Sposób wykonania, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodą z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń.
    4. Metody rozcieńczeniowe w podłożach płynnych i stałych.
    5. Metody z zastosowaniem stężeń granicznych; metody automatyczne.
    6. Antybiotyki aminoglikozydowe, makrolidy, glikopeptydy.

     

    Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Piotr Wieczorek / mgr Łukasz Korczak

     


     

    SEMINARIUM 9.12.2025

    Metody oznaczania wrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki (interpretacja wyników) – metody jakościowe i ilościowe.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Znaczenie pojęć: „wrażliwość/oporność mikrobiologiczna”, „kliniczna wrażliwość”, „kliniczna oporność”, „minimalne stężenie hamujące” – MIC, „minimalne stężenie bakteriobójcze” – MBC, „szczep oporny” – R, „szczep wrażliwy, standardowy schemat dawkowania” – S, „szczep wrażliwy, zwiększona ekspozycja” – I, „inokulum”, „wartość graniczna”.
    2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe; metody ilościowe; metody półilościowe.
    3. Sposoby przygotowania zawiesiny badanego szczepu.
    4. Sposób wykonania, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodą dyfuzyjno-krążkową.
    5. Czynniki wpływające na wielkość stref zahamowania wzrostu, odczyt i interpretację badania lekowrażliwości metodą dyfuzyjno-krążkową.
    6. Sposób wykonania, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodą z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń.
    7. Metody rozcieńczeniowe w podłożach płynnych i stałych.
    8. Metody z zastosowaniem stężeń granicznych; metody automatyczne.
    9. Metoda RAST - szybki test badania lekowrażliwości bezpośrednio z butelek do posiewów krwi.
    10. Standaryzacja badania lekowrażliwości wg EUCAST (European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing).
    11. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:
    • antybiotyk, chemioterapeutyk,
    • terapia empiryczna, celowana, sekwencyjna, skojarzona,
    • mechanizmy działania antybiotyków,
    • skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD,
    • efekt poantybiotykowy (PAE),
    • spectrum działania antybiotyków,
    • działania niepożądane.
    1. Antybiotyki β-laktamowe i inhibitory β-laktamaz.

     

    Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Piotr Wieczorek

     


     

    Ćwiczenie 9/10/11.12.2025

    Badanie czystości mikrobiologicznej powietrza i powierzchni.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Czystość mikrobiologiczna powietrza:
    • klasy czystości powietrza,
    • metody i warunki przeprowadzania dezynfekcji powietrza,
    • czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji powietrza,
    • środki stosowane do dezynfekcji powietrza oraz wymagania im stawiane,
    • metody kontroli czystości mikrobiologicznej powietrza: metody mikroskopowe, metody hodowlane, metody wiązane (m. sedymentacyjna, m. filtracyjne, m. zderzeniowe, m. odśrodkowe).
    1. Czystość mikrobiologiczna powierzchni: metody kontroli czystości mikrobiologicznej powierzchni:
    • metody jakościowe,
    • metody ilościowe (m. kontaktowa, m. spłukiwań, m. wypłukiwań).

     

    Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Paweł Sacha / mgr Łukasz Korczak / dr hab. n. med. Piotr Majewski

     


     

    Ćwiczenie 2/3/4.12.2025

    Sterylizacja – metody i kontrola. Postępowanie ze zdekontaminowanym sprzętem, w tym sterylnymi wyrobami medycznymi.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Sterylizacja:
    • definicja,
    • cel,
    • zasady wyboru metod sterylizacji,
    • metody sterylizacji z podziałem na sterylizację fizyczną, chemiczną i mechaniczną,
    • harakterystyka i mechanizmy działania metod sterylizacji na drobnoustroje.
    1. Kontrola procesu sterylizacji:
    • wskaźniki fizyczne, chemiczne i biologiczne,
    • zasady kontroli sterylizacji i interpretacja uzyskiwanych wyników.
    1. Zapobieganie zakażeniom przenoszonym drogą krwi.
    2. Wykład dotyczący sterylizacji.
    3. Zasady postępowania aseptycznego.
    4. Postępowanie ze zdekontaminowanym sprzętem, w tym sterylnymi wyrobami medycznymi.

     

    Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak / dr hab. n. med. Paweł Sacha

     


     

    KOLOKWIUM NR 1

    „Mikrobiologia ogólna. Dezynfekcja, sterylizacja. Taksonomia drobnoustrojów”

    odbędzie się 17.12.2025 (środa) o godz. 17:00 w Auli Collegium Pathologicum.

     

    Zakres tematyczny kolokwium obejmuje:

    1. Treści tematyczne związane z wykładami:
    • Wstęp do mikrobiologii: rys historyczny, działy, charakterystyka podstawowych grup drobnoustrojów, podstawowe pojęcia.
    • Budowa komórki bakteryjnej.
    • Fizjologia bakterii.
    • Genetyka drobnoustrojów.
    • Wyznaczniki chorobotwórczości. Patomechanizmy działania chorobotwórczego drobnoustrojów.
    • Dezynfekcja i antyseptyka.
    • Sterylizacja. Metody kontroli.
    1. Treści tematyczne związane z ćwiczeniami:
    • Technika mikroskopowania. Rodzaje barwień. Barwienie metodą Grama. Opis morfologii komórek.
    • Zasady hodowli drobnoustrojów – podłoża, techniki posiewów. Opis morfologii kolonii. Typy wzrostu na podłożach płynnych.
    • Metody identyfikacji drobnoustrojów: biochemiczne, serologiczne, genetyczne i inne.
    • Dezynfekcja i antyseptyka.
    • Sterylizacja – metody i kontrola.
    • Badanie czystości mikrobiologicznej powietrza i powierzchni.
    1. Taksonomia drobnoustrojów (skrypt).

     


     

    Ćwiczenie 25/26/27.11.2025

    Dezynfekcja i antyseptyka. Postępowanie z odpadami medycznymi.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Podstawowe definicje: dekontaminacja, dezynfekcja, antyseptyka, środek dezynfekcyjny.
    2. Podział metod dezynfekcji.
    3. Charakterystyka grup środków dezynfekcyjnych.
    4. Cechy charakterystyki środka dezynfekcyjnego.
    5. Zasady przygotowywania środków dezynfekcyjnych i przeprowadzania dezynfekcji chemicznej.
    6. Czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji.
    7. Zasady dezynfekcji rąk (wg WHO).
    8. Zasady postępowania aseptycznego.
    9. Zapobieganie zakażeniom przenoszonym drogą krwi.
    10. Postępowanie z odpadami medycznymi.

     

    Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Paweł Sacha / mgr Łukasz Korczak / dr hab. n. med. Piotr Wieczorek

     

    Materiał 1

    Materiał 2

    Materiał 3

     


     

    Ćwiczenie 18/19/20.11.2025

    Metody identyfikacji drobnoustrojów: biochemiczne, serologiczne, genetyczne i inne.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Zasady identyfikacji biochemicznej drobnoustrojów.
    2. Metody immunologiczne w identyfikacji i typowaniu drobnoustrojów.
    3. Typowanie bakteriofagowe.
    4. Metody biologii molekularnej – PCR, Real-time PCR, RT-PCR, PFGE, sekwencjonowanie, sondy genetyczne.
    5. Inne metody –spektrometria mas np. MALDI-TOF, chromatograficzne.
    6. Fizjologia drobnoustrojów.
    7. Wyznaczniki chorobotwórczości, patomechanizmy działania chorobotwórczego drobnoustrojów.

     

    Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Paweł Sacha / dr hab. n. med. Piotr Majewski

     


     

    Ćwiczenie 4/5/6.11.2025

    Zasady hodowli drobnoustrojów – podłoża, techniki posiewów. Opis morfologii kolonii. Typy wzrostu na podłożach płynnych cd.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Zakres tematyczny jak ćwiczenie z dnia 28/29/30.10.2025.
    2. Genetyka drobnoustrojów.

     

    Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Paweł Sach / dr hab. n. med. Piotr Wieczorek

     


     

    Ćwiczenie 28/29/30.10.2025

    Zasady hodowli drobnoustrojów – podłoża, techniki posiewów. Opis morfologii kolonii. Typy wzrostu na podłożach płynnych.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Podstawowe pojęcia: kolonia bakteryjna, podłoże hodowlane.
    2. Kolonia bakteryjna/grzybów – cechy opisujące.
    3. Podział podłóż hodowlanych ze względu na konsystencję: stałe, płynne, półpłynne.
    4. Podział podłóż hodowlanych ze względu na skład i funkcje: naturalne, półsyntetyczne, sztuczne, proste, wzbogacone, specjalne, wybiórcze, wybiórczo-różnicujące, różnicujące, transportowe, transportowo-wzrostowe, chromogenne.
    5. Zasady hodowli drobnoustrojów (zawartość składników odżywczych w podłożu, pH, ciśnienie osmotyczne, temperatura, potencjał oksydo-redukcyjny, czas).
    6. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
    7. Typy wzrostu drobnoustrojów na podłożach płynnych.
    8. Fizjologia komórki bakteryjnej.

     

    Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Paweł Sacha / dr hab. n. med. Piotr Wieczorek

     


     

    Ćwiczenie 21/22/23.10.2025

    Technika mikroskopowania. Rodzaje barwień. Barwienie metodą Grama. Opis morfologii komórek cd.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Zakres tematyczny jak 2 ostatnie ćwiczenia.

     

    Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Paweł Sacha / dr hab. n. med. Piotr Wieczorek

     


     

    Ćwiczenie 14/15/16.10.2025

    Technika mikroskopowania. Rodzaje barwień. Barwienie metodą Grama. Opis morfologii komórek cd.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Zakres tematyczny jak ćwiczenie z dnia 7/8/9.10.2025.

     

    Prowadzący zajęcia: dr hab. Piotr Majewski / dr hab. Piotr Wieczorek

     


     

    TAKSONOMIA DROBNOUSTROJÓW

     


     

    Ćwiczenie 7/8/9.10.2025

    Organizacja i regulamin ćwiczeń. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Technika mikroskopowania. Rodzaje barwień. Barwienie metodą Grama. Opis morfologii komórek.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii. Zasada działania i zastosowanie.
    2. Mikroskop świetlny – budowa i zasady posługiwania się podczas oglądania preparatów.
    3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
    4. Barwienie metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
    5. Morfologia drobnoustrojów (bakterie, grzyby):
    • kształt,
    • wielkość,
    • sposób ułożenia w preparacie,
    • sposób barwienia w metodzie Grama.
    1. Podział metod barwienia: barwienie proste, złożone, pozytywne, negatywne, pozytywno-negatywne.
    2. Zastosowanie i zasada barwienia: Manevalla, Neissera, Ziehl-Neelsena, Dornera, Loefflera.
    3. Budowa komórki bakteryjnej.

     

    Prowadzący zajęcia: dr hab. Piotr Wieczorek

     


     

    Pierwszy wykład z diagnostyki mikrobiologicznej dla studentów III roku Analityki Medycznej

     

    odbędzie się 2.10.2025 r. (czwartek) o godz. 10:15-11:45

    w sali nr 2 Collegium Novum.

    Pozostałe wykłady będą odbywały się zgodnie z harmonogramem zajęć.

     

    Pierwsze ćwiczenia odbędą się

    7.10.2025 r. (wtorek) o godz. 13:15-14:45 grupa 5

    7.10.2025 r. (wtorek) o godz. 15:00-16:30 grupa 2

    8.10.2025 r. (środa) o godz. 14:45-16:15 grupa 1

    9.10.2025 r. (czwartek) o godz. 8:00-9:30 grupa 3

    9.10.2025 r. (czwartek) o godz. 12:15-13:45 grupa 4

    Ćwiczenia będą odbywały się w sali dydaktycznej Zakładu Diagnostyki Mikrobiologicznej i Immunologii Infekcyjnej.

     

    Pierwsze zajęcia seminaryjne odbędą się:

    9.12.2025 r. (wtorek) o godz. 13:15-14:45 grupa A w sali nr 1 Collegium Novum

    9.12.2025 r. (wtorek) o godz. 15:00-16:30 grupa B w sali nr 1 Collegium Novum

    Pozostałe seminaria będą odbywały się zgodnie z ustalonym harmonogramem zajęć.


    Na pierwsze ćwiczenia student obowiązany jest:

    1. Przyjść ubrany w biały fartuch laboratoryjny z długimi rękawami oraz miękkie obuwie (obowiązuje bezwzględnie zmiana obuwia – nie wolno używać ochraniaczy na buty). Fartuch na czas wszystkich zajęć należy pozostawiać w szatni studenckiej zakładu (nie można używać na innych zajęciach). Fartuchy po skończonych zajęciach będą poddane utylizacji (na koniec semestru letniego).
    2. Wszyscy studenci przed rozpoczęciem zajęć oczekują całą grupą w holu przed zakładem.