• Aktualności. Mikroskop świetlny.
  • Ostatnia zmiana 08.12.2019 przez Zakład Diagnostyki Mikrobiologicznej i Immunologii Infekcyjnej

    Aktualności

     

    Ćwiczenie 18.12.201 – GRUPA 3

    Zasady pobierania i transportu materiałów biologicznych do badań mikrobiologicznych.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Ogólne zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.
    2. Szczegółowe zasady pobierania: moczu, krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego, wymazów z górnych dróg oddechowych, plwociny, BAL, wymazy z ran, ropa.
    3. Zasady pobierania materiałów w diagnostyce zakażeń układu moczowo-płciowego.

     

    Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

     


     

    Ćwiczenie 17.12.2019 – GRUPA 1

    Ćwiczenie 17.12.2019 – GRUPA 2

    Podstawy antybiotykoterapii, metody badania lekowrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki oraz interpretacja wyników, oporność bakterii na antybiotyki.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Znaczenie pojęć: wrażliwość mikrobiologiczna, minimalne stężenie hamujące (MIC), minimalne stężenie bakteriobójcze (MBC), szczep oporny (R), szczep wrażliwy (S), inokulum.
    2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe; metody ilościowe; metody półilościowe.
    3. Zasada, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodami:
    • dyfuzyjnymi: metodą dyfuzyjno-krążkową, metodą z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń antybiotyku, (np. E-testy),
    • rozcieńczeniowymi: metodą rozcieńczeniową w bulionie, metodą rozcieńczeniową w agarze, metodą stężeń granicznych.
    1. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:
    • antybiotyk, chemioterapeutyk, terapia przeciwdrobnoustrojowa,
    • terapia empiryczna, celowana, sekwencyjna, skojarzona,
    • mechanizmy działania antybiotyków,
    • efekty działania – dz. bakteriobójcze i bakteriostatyczne,
    • skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD: czas powyżej MIC (T>MIC), stężenie maksymalne do MIC (Cmax/MIC), wielkość pola pod krzywą (AUC24/MIC),
    • efekt poantybiotykowy (PAE),
    • spektrum działania antybiotyków i chemioterapeutyków,
    • działania niepożądane.
    1. Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków: β-laktamowe, aminoglikozydy, chinolony, makrolidy, tetracykliny, glikopeptydy, linkozamidy.
    2. Oporność bakterii na antybiotyki: oporność mikrobiologiczna, szczep dziki, oporność naturalna, oporność nabyta.
    3. Genetyczne podstawy oporności bakterii na antybiotyki: mutacja, koniugacja, transformacja, transdukcja.
    4. Kliniczne fenotypy oporności: MRSA, ESBL, MBL, HLAR, MLSB, KPC, OXA-48, NDM.
    5. Leki przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe – grupy, przykłady leków, mechanizm działania, krótka charakterystyka.

     

    Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

     


     

    Ćwiczenie 13.12.2019 – GRUPA 2

    Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Podstawowe pojęcia: kolonia bakteryjna, podłoże hodowlane.
    2. Podział podłóż hodowlanych ze względu na:
    • konsystencję: stałe, półpłynne, płynne,
    • skład i funkcje: naturalne, półsyntetyczne, sztuczne, proste, wzbogacone, specjalne, wybiórcze, wybiórczo-różnicujące, różnicujące, transportowe, transportowo-wzrostowe.
    1. Zasady hodowli drobnoustrojów: zawartość składników odżywczych w podłożu, pH, ciśnienie osmotyczne, temperatura, potencjał oksydo-redukcyjny, czas inkubacji.
    2. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
    3. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
    4. Morfologia kolonii bakteryjnej – cechy ją opisujące.
    5. Badanie cech biochemicznych, metody immunologiczne w identyfikacji drobnoustrojów.
    6. Inne metody identyfikacji: metody molekularne (PCR, real time-PCR), spektrometria MALDI-TOF.

     

    Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

     


     

    Ćwiczenie 11.12.2019 – GRUPA 3

    Dezynfekcja i sterylizacja – metody i kontrola oraz czynniki wpływające na ich skuteczność.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Podstawowe definicje: dekontaminacja, dezynfekcja, sterylizacja, antyseptyka, środek dezynfekcyjny, sanityzacja.
    2. Podział metod dezynfekcji.
    3. Charakterystyka grup środków dezynfekcyjnych.
    4. Cechy charakterystyki środka dezynfekcyjnego.
    5. Zasady przygotowywania środków dezynfekcyjnych i przeprowadzania dezynfekcji chemicznej.
    6. Czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji.
    7. Zasady dezynfekcji rąk.
    8. Zasady postępowania aseptycznego.
    9. Sterylizacja:
    • definicja,
    • cel,
    • zasady wyboru metod sterylizacji,
    • metody sterylizacji z podziałem na sterylizację fizyczną, chemiczną i mechaniczną,
    • charakterystyka i mechanizmy działania metod sterylizacji na drobnoustroje,
    • czynniki wpływające na skuteczność sterylizacji.
    1. Kontrola procesu sterylizacji:
    • wskaźniki fizyczne, chemiczne i biologiczne,
    • zasady kontroli sterylizacji i interpretacja uzyskiwanych wyników.

     

    Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

     


     

    Ćwiczenie 10.12.2019 – GRUPA 2

    Organizacja i regulamin ćwiczeń. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej, grzybiczej.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii. Zasada działania i zastosowanie.
    2. Mikroskop świetlny – budowa i zasady posługiwania się podczas oglądania gotowych preparatów.
    3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
    4. Barwienie metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
    5. Morfologia drobnoustrojów (bakterie, grzyby):
    • kształt,
    • wielkość,
    • sposób ułożenia w preparacie,
    • sposób barwienia w metodzie Grama.
    1. Podział metod barwienia: barwienie proste, złożone, pozytywne, negatywne, pozytywno-negatywne.
    2. Budowa komórki prokariotycznej, eukariotycznej oraz wirusów.

     

    Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

     


     

    Ćwiczenie 10.12.2019 – GRUPA 1

    Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Podstawowe pojęcia: kolonia bakteryjna, podłoże hodowlane.
    2. Podział podłóż hodowlanych ze względu na:
    • konsystencję: stałe, półpłynne, płynne,
    • skład i funkcje: naturalne, półsyntetyczne, sztuczne, proste, wzbogacone, specjalne, wybiórcze, wybiórczo-różnicujące, różnicujące, transportowe, transportowo-wzrostowe.
    1. Zasady hodowli drobnoustrojów: zawartość składników odżywczych w podłożu, pH, ciśnienie osmotyczne, temperatura, potencjał oksydo-redukcyjny, czas inkubacji.
    2. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
    3. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
    4. Morfologia kolonii bakteryjnej – cechy ją opisujące.
    5. Badanie cech biochemicznych, metody immunologiczne w identyfikacji drobnoustrojów.
    6. Inne metody identyfikacji: metody molekularne (PCR, real time-PCR), spektrometria MALDI-TOF.

     

    Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

     


     

    Ćwiczenie 4.12.2019 – GRUPA 3

    Podstawy antybiotykoterapii, metody badania lekowrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki oraz interpretacja wyników, oporność bakterii na antybiotyki.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Znaczenie pojęć: wrażliwość mikrobiologiczna, minimalne stężenie hamujące (MIC), minimalne stężenie bakteriobójcze (MBC), szczep oporny (R), szczep wrażliwy (S), inokulum.
    2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe; metody ilościowe; metody półilościowe.
    3. Zasada, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodami:
    • dyfuzyjnymi: metodą dyfuzyjno-krążkową, metodą z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń antybiotyku, (np. E-testy),
    • rozcieńczeniowymi: metodą rozcieńczeniową w bulionie, metodą rozcieńczeniową w agarze, metodą stężeń granicznych.
    1. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:
    • antybiotyk, chemioterapeutyk, terapia przeciwdrobnoustrojowa,
    • terapia empiryczna, celowana, sekwencyjna, skojarzona,
    • mechanizmy działania antybiotyków,
    • efekty działania – dz. bakteriobójcze i bakteriostatyczne,
    • skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD: czas powyżej MIC (T>MIC), stężenie maksymalne do MIC (Cmax/MIC), wielkość pola pod krzywą (AUC24/MIC),
    • efekt poantybiotykowy (PAE),
    • spektrum działania antybiotyków i chemioterapeutyków,
    • działania niepożądane.
    1. Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków: β-laktamowe, aminoglikozydy, chinolony, makrolidy, tetracykliny, glikopeptydy, linkozamidy.
    2. Oporność bakterii na antybiotyki: oporność mikrobiologiczna, szczep dziki, oporność naturalna, oporność nabyta.
    3. Genetyczne podstawy oporności bakterii na antybiotyki: mutacja, koniugacja, transformacja, transdukcja.
    4. Kliniczne fenotypy oporności: MRSA, ESBL, MBL, HLAR, MLSB, KPC, OXA-48, NDM.
    5. Leki przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe – grupy, przykłady leków, mechanizm działania, krótka charakterystyka.

     

    Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

     


     

    Ćwiczenie 29.11.2019 – GRUPA 3

    Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Podstawowe pojęcia: kolonia bakteryjna, podłoże hodowlane.
    2. Podział podłóż hodowlanych ze względu na:
    • konsystencję: stałe, półpłynne, płynne,
    • skład i funkcje: naturalne, półsyntetyczne, sztuczne, proste, wzbogacone, specjalne, wybiórcze, wybiórczo-różnicujące, różnicujące, transportowe, transportowo-wzrostowe.
    1. Zasady hodowli drobnoustrojów: zawartość składników odżywczych w podłożu, pH, ciśnienie osmotyczne, temperatura, potencjał oksydo-redukcyjny, czas inkubacji.
    2. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
    3. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
    4. Morfologia kolonii bakteryjnej – cechy ją opisujące.
    5. Badanie cech biochemicznych, metody immunologiczne w identyfikacji drobnoustrojów.
    6. Inne metody identyfikacji: metody molekularne (PCR, real time-PCR), spektrometria MALDI-TOF.

     

    Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

     


     

    Ćwiczenie 6.12.2019 – GRUPA 1

    Ćwiczenie 22.11.2019 – GRUPA 3

    Organizacja i regulamin ćwiczeń. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej, grzybiczej.

     

    Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

    1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii. Zasada działania i zastosowanie.
    2. Mikroskop świetlny – budowa i zasady posługiwania się podczas oglądania gotowych preparatów.
    3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
    4. Barwienie metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
    5. Morfologia drobnoustrojów (bakterie, grzyby):
    • kształt,
    • wielkość,
    • sposób ułożenia w preparacie,
    • sposób barwienia w metodzie Grama.
    1. Podział metod barwienia: barwienie proste, złożone, pozytywne, negatywne, pozytywno-negatywne.
    2. Budowa komórki prokariotycznej, eukariotycznej oraz wirusów.

     

    Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

     


     

    TAKSONOMIA DROBNOUSTROJÓW

     


     

    Pierwszy wykład z mikrobiologii dla I roku Położnictwa

    odbędzie się 5.11.2019 r. (wtorek) w godz. 8.00-9.30

    w Auli 1.6 WNoZ.

     

    Pierwsze ćwiczenia rozpoczną się w dniach:

    grupa 1 – 6.12.2019 r. (piątek) godz. 18.20-19.50

    grupa 2 – 10.12.2019 r. (wtorek) godz. 18.00-19.30

    grupa 3 – 22.11.2019 r. (piątek) godz. 18.20-19.50

    w sali dydaktycznej Zakładu Diagnostyki Mikrobiologicznej i Immunologii Infekcyjnej.

    Pozostałe ćwiczenia będą odbywały się zgodnie z harmonogramem zajęć.

     

    Na pierwsze ćwiczenia student obowiązany jest:

    1. Przyjść ubrany w biały fartuch laboratoryjny z długimi rękawami i miękkie obuwie (obowiązuje bezwzględnie zmiana obuwia – nie wolno używać ochraniaczy na buty). Fartuch na czas wszystkich zajęć należy pozostawiać w szatni studenckiej zakładu. Fartuchy po skończonych zajęciach będą poddane utylizacji.
    2. Studenci przed rozpoczęciem zajęć oczekują w holu przed zakładem.